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IF14.3!剝繭抽絲,組織來源小細胞外囊泡(外泌體)分離與多組學聯合檢測思路詳解

2024-11-15

期刊:ADVANCED SCIENCE

通(tong)訊作(zuo)者:張莎莎、柴人杰

單位:東南大學

影響因子:IF14.3

研究方向(xiang):內耳(er)毛細胞(bao)再生與保(bao)護;耳(er)聾基因致聾機制


一、研究背景

小細胞外囊泡(sEVs)是細胞間通訊的重要介質。與體外來源的sEVs相比,組織來源的sEVs可以更準確地反映特定組織釋放的體內信號。目前,有關sEVs在耳蝸中的作用的研究主要依賴于體外來源的sEVs。因此,東南大學張莎莎、柴人杰作為共同通訊作者,2024年11月5日在Advanced Science 發表了題為“Isolation and Comprehensive Analysis of Cochlear Tissue-Derived Small Extracellular Vesicles”的研究論文。研究應用小RNA測序、蛋白質組學分析耳蝸組織來源sEV(CDsEV)的miRNA和蛋白質,并且應用單個CDsEV測序和單細胞RNA測序數據的聯合分析來追蹤CDsEVs的細胞來源。其中單CDsEV-RNA測(ce)序和部分數(shu)據分析由上海派森諾完成(cheng)


Highlight:

①該研究評估了三種耳蝸組織消(xiao)化方法(fa)和CDsEV分(fen)離(li)(li)方法(fa),首(shou)次提出了使用膠原酶D和DNase ?結(jie)合蔗糖密度梯度離(li)(li)心分(fen)離(li)(li)CDsEVs的最佳方法(fa)。

②該(gai)研究全面研究了CDsEVs的(de)(de)內容。發現CDsEVs的(de)(de)miRNA和蛋白(bai)質對(dui)于維持正常的(de)(de)聽覺功(gong)能至關重(zhong)要,CDsEVs中的(de)(de)FGFR1可能通過sEVs介導耳蝸毛細胞(bao)的(de)(de)存活(huo)。

③該研究全面研究了CDsEVs細胞來源。通過單外泌體RNA測序(xu)發(fa)現不(bu)同(tong)類型的(de)耳蝸細胞分(fen)泌的(de)CDsEVs數量不(bu)同(tong),其中K?lliker器細胞和支持細胞分(fen)泌最多。


小細(xi)(xi)胞(bao)外囊泡(pao)(sEVs)的(de)直徑在30–200 nm,可被(bei)幾(ji)乎所有類型的(de)細(xi)(xi)胞(bao)分泌到(dao)體液(例如血(xue)液、尿(niao)液、唾液、淚(lei)液和腦脊液)和間質中(zhong),對sEVs及其內容物的(de)研究對于闡明細(xi)(xi)胞(bao)間通訊機制(zhi)和增強臨床(chuang)診斷和治療具有重(zhong)要意(yi)義。過(guo)去幾(ji)年,組織來源(yuan)的(de) sEV(TDsEV)已成為生物醫學研究的(de)重(zhong)點。然而(er),因為在TDsEV分離(li)過(guo)程中(zhong)會被(bei)破裂細(xi)(xi)胞(bao)的(de)細(xi)(xi)胞(bao)囊泡(pao)污(wu)染,TDsEVs的(de)分離(li)和檢(jian)測仍然具有挑戰性(xing)。

傳統分(fen)離技(ji)術超速離心、超濾法、共聚沉淀、免疫磁珠等都會引入更復雜的成分(fen),而傳統的檢測(ce)方法例(li)如TEM,NTA,WB又(you)缺乏外(wai)泌體的細(xi)胞來源信息(2021,姚波)。本研究提(ti)供了針對CDsEVs的分(fen)離方法,結合多組學,包(bao)括單個細(xi)胞層(ceng)面(mian)的高通量檢測(ce)的思路,為增強對耳(er)蝸中(zhong)CDsEVs的認識(shi)提(ti)供了很(hen)好的參(can)考(kao)。


二、研(yan)究(jiu)思路


三(san)、研究結果

1.三(san)種耳蝸組織消化(hua)方法和CDsEV分離方法評估

考慮到即使是最溫和的研磨也不能完全避免細胞內容物的污染,導致提取的CDsEV存在雜質,阻礙了進一步的功能研究,需要建立最優的酶切方法,最大限度地避免細胞損傷,并將CDsEV釋放到組織細胞間隙。本研究評估了膠原酶D聯合DNase Ι、單獨使用膠原酶III和單獨使用木瓜蛋白酶的消化效果,以確定消化新生小鼠耳蝸組(zu)織的最佳酶。隨后采用UC、蔗糖密度梯度超離心(SDGU)和SEC分離CDsEV,并通過對比分析最終選定以3u膠原酶D和40u dna酶Ι消化耳蝸后,SDGU分離CDsEV(圖1-圖3)。

圖1:CDsEV分離(li)、檢(jian)測流程圖


2.小(xiao)RNA測(ce)序分(fen)析耳蝸(gua)組織來源(yuan)sEV(CDsEV)的miRNA和(he)蛋白質

通(tong)(tong)過(guo)小RNA測(ce)序(xu)分(fen)析了耳蝸(gua)樣本(ben)和(he)CDsEV兩個樣本(ben)。共檢測(ce)到550個miRNA,其(qi)中(zhong)(zhong)兩組均有399個(圖(tu)4A、B),僅在CDsEV或耳蝸(gua)組織中(zhong)(zhong)存在的miRNA分(fen)別(bie)有73個和(he)78個(圖(tu)4C)。GO通(tong)(tong)路(lu)富集分(fen)析發現(xian)sEV主要(yao)來源于核(he)(he)內(nei)體、早(zao)期核(he)(he)內(nei)體和(he)晚(wan)期核(he)(he)內(nei)體,參與(yu)神經(jing)系統發育(yu)、囊泡介(jie)導的運輸、早(zao)期核(he)(he)內(nei)體到晚(wan)期核(he)(he)內(nei)體的運輸,參與(yu)多(duo)種重要(yao)細胞功能與(yu)信(xin)號通(tong)(tong)路(lu)(圖(tu)4G-H)。此外,KEGG分(fen)析發現(xian)65個CDsEV衍生(sheng)的miRNA的靶基因(yin)參與(yu)多(duo)種聽覺(jue)活動信(xin)號通(tong)(tong)路(lu)(圖(tu)4I)。這(zhe)些結果表明,CDsEV中(zhong)(zhong)的miRNA可能在聽覺(jue)個體發生(sheng)和(he)成熟(shu)過(guo)程中(zhong)(zhong)起調節作用。

圖(tu)4.CDsEV的小RNA測序(xu)分析


3.蛋白(bai)質組學探索(suo)CDsEV的蛋白(bai)質組成和生物學功能(neng)

以(yi)等量(liang)的(de)(de)耳蝸(gua)組織蛋(dan)(dan)白為對(dui)(dui)照,對(dui)(dui)CDsEV進行(xing)了無標記的(de)(de)定(ding)量(liang)蛋(dan)(dan)白質組學分析。每組包(bao)括3個(ge)生(sheng)(sheng)物重(zhong)復,樣品(pin)間相關性良(liang)好(hao)(圖(tu)5A)。兩組共鑒定(ding)出4739個(ge)蛋(dan)(dan)白,其中CDsEV鑒定(ding)出3040個(ge)蛋(dan)(dan)白,耳蝸(gua)組織鑒定(ding)出4301個(ge)蛋(dan)(dan)白(圖(tu)5B)。通路富集分析(圖(tu)5F-H)表明CDsEV中的(de)(de)蛋(dan)(dan)白在(zai)聽力發育過程中積極參與耳蝸(gua)形成、HC成熟和(he)突(tu)觸連接形成的(de)(de)生(sheng)(sheng)物學過程,對(dui)(dui)聽覺系統的(de)(de)建(jian)立和(he)聲(sheng)音感知具有重(zhong)要意義。

圖(tu)5.CDsEV的小RN蛋(dan)白質(zhi)組(zu)學分析


4.CDsEV FGFR1的表(biao)達和作用

通過WB、OC和(he)SGN (圖6A-C)的免疫熒(ying)光染色檢(jian)測(ce)P3小鼠耳蝸BM、M和(he)SL中FGFR1的表達。發現FGFR1表達受(shou)損會影響HC的存活(huo)和(he)細胞凋亡(wang)。

圖(tu)6.CDsEV中(zhong)FGFR1的表達和作用(yong)


5.單sEV-seq數(shu)(shu)據(ju)與(yu)耳蝸scRNA-seq數(shu)(shu)據(ju)的聯(lian)合(he)分析追(zhui)蹤(zong)CDsEV的細(xi)胞(bao)起源

利用10x Genomics測(ce)(ce)序平臺對CDsEV進行了單(dan)EV測(ce)(ce)序分(fen)析。通(tong)過CB2算法(fa)處理后(hou),可(ke)以明(ming)顯區分(fen)比細胞小的CDsEV(圖(tu)(tu)7A)。之后(hou),共檢測(ce)(ce)到536個(ge)符合條件的sEV(圖(tu)(tu)7B)。降(jiang)維聚類為8個(ge)細胞群(qun)(圖(tu)(tu)7C)。

為了追蹤CDsEV的細胞起源,進一步(bu)將單個CDsEV-seq數據與耳蝸的scRNA-seq數據(GSE135913)整合,分(fen)(fen)為8個(ge)(ge)細(xi)(xi)胞群,每個(ge)(ge)細(xi)(xi)胞群都(dou)包(bao)含sev和(he)耳蝸細(xi)(xi)胞,這(zhe)表(biao)明CDsEV起(qi)源于許多(duo)不(bu)同的(de)(de)細(xi)(xi)胞類型(圖(tu)7E,F)。在8個(ge)(ge)細(xi)(xi)胞群中(zhong)(zhong),SC簇中(zhong)(zhong)sEV的(de)(de)比(bi)例最(zui)高(38%,圖(tu)7G),這(zhe)表(biao)明SC中(zhong)(zhong)每個(ge)(ge)細(xi)(xi)胞分(fen)(fen)泌的(de)(de)sEV數量最(zui)高。就每個(ge)(ge)細(xi)(xi)胞群中(zhong)(zhong)sEV的(de)(de)總數而言,SCs和(he)K?lliker’s organ (KO)細(xi)(xi)胞中(zhong)(zhong)sEV的(de)(de)含量最(zui)高,這(zhe)表(biao)明SCs和(he)KOs比(bi)其他(ta)細(xi)(xi)胞群分(fen)(fen)泌更多(duo)的(de)(de)sEV(SCs和(he)KOs中(zhong)(zhong)分(fen)(fen)別(bie)有161和(he)158個(ge)(ge)sEV,圖(tu)7H)。這(zhe)些結果表(biao)明,SCs和(he)KOs具有最(zui)強大的(de)(de)CDsEV分(fen)(fen)泌能(neng)力(li),是CDsEV的(de)(de)主要來(lai)源。

圖7.單(dan)個CDsEV轉(zhuan)錄組與(yu)耳蝸(gua)scRNA-seq聯(lian)合分析


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